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2025

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04

vAPCI-CMS 联用技术:基于细菌代谢 VOCs 的超早期鉴别与动态监测!


在抗生素与细菌长达 70 余年的对抗中,日益严峻的抗菌素耐药性问题正推动科研走向纵深。研究发现,细菌释放的挥发性有机化合物(VOCs)——这些由代谢活动生成的独特“分子指纹”,为识别菌种、破解耐药机制提供了关键线索!Longshorewell Institute 研究团队通过vAPCI-CMS 质谱联用方案,成功捕获细菌代谢释放的挥发性有机物(VOCs),仅需 24 小时即可 100% 区分大肠杆菌与金黄色葡萄球菌,2 小时即显示部分区分能力!

技术亮点
  • 快速检测:仅需2分钟完成样本分析
  • 高灵敏度:区分大肠杆菌(E.coli)与金黄色葡萄球菌(Staphylococcusaureus)
  • 实时监测:非破坏性采样,支持长时间动态监测,追踪细菌生长过程中的VOC变化
实验成果
  • 24小时内实现100%灵敏度与特异性区分;

  • 仅需2小时即可部分区分细菌种类;

  • 通过代谢组学分析,揭示细菌生长与VOC释放的动态关系。

实验方法

 
细菌平板制备流程

采用OD600值在0.2-0.5 AU(吸光度单位)的液体培养基菌液,制备细菌平板(见图1)。所有接种平板均以一式三份制备,接种后置于37°C恒温箱培养,确保数据可重复性。同步制备三组空白琼脂平板,与接种平板共同培养,排除培养基背景干扰。

图 1:(A) 大肠杆菌培养的琼脂平板;(B) 金黄色葡萄球菌培养的琼脂平板;以及两者同时生长的平板。

vAPCI-MS细菌VOCs分析全流程

仪器配置:

      采用 AIS expression CMS 质谱仪,搭载 vAPCI 离子源(图2)

图 2:vAPCI-CMS,用于采集挥发性有机化合物。

定制化平板采样器(图3)恒温 37°C,与 100°C 加热传输线直连。

图 3:为 90mm 琼脂平板设计的定制 VOC 采样器,直接连接到 vAPCI

核心参数:

      离子源气体温度:350°C;

      毛细管温度:250°C;

      传输线温度:100°C;

      动态采样传输线流速:600 mL/min;

      质荷比范围:m/z 30-300;

      单次扫描时间:400毫秒;

      接种后2/6/24/48/72/96小时取样,单次分析仅需2分钟对大肠杆菌进行24小时不间断采样,动态捕捉VOCs代谢指纹演变。

实验结果

细菌VOCs的检测

每个样本通过 150 次质谱扫描叠加,生成高信噪比特征光谱。图 4 显示了空白琼脂板和接种 24 小时的大肠杆菌平板,差异峰直观呈现菌株特异性代谢指纹。

图 4:空白琼脂平板(左)和接种 24 小时后的大肠杆菌平板的光谱。

细菌VOC特征的区分

使用 SIMCA 软件包(Umetrics,版本 14.1)进行多变量分析。利用从 m/z 30 到 300 的每个 m/z 响应生成统计模型,分别使用偏小二乘判别分析(PLS-DA)和主成分分析(PCA)。对空白、大肠杆菌和金黄色葡萄球菌在 2 至 96 小时的每个时间点的聚类进行了评估。24 小时后空白组/大肠杆菌/金葡菌实现 100% 敏感度&特异性完全分离。在 2 小时时观察到部分分离,金黄色葡萄球菌的灵敏度为 100%,特异性为 91.3%,而大肠杆菌的灵敏度为 87.5%,特异性为 73.9%(图 5),提示代谢指纹在菌种潜伏期已具差异性!

图 5:接种后 2 小时(左)和 48 小时(右)的空白琼脂、大肠杆菌和金黄色葡萄球菌的 PCA 分析得分图。

细菌生长动态追踪

大肠杆菌是一种产生吲哚(m/z 118)的细菌,这是大肠杆菌光谱中的主要离子。通过在 24 小时内监测 m/z 118 的变化,可以确定大肠杆菌的生长曲线(图 6)。

图 6:连续 24 小时监测吲哚(m/z 118)的大肠杆菌生长曲线。

多菌株同步检测

基于多变量分析(MVA)筛选的特征标记物,可以实现大肠杆菌(E.coli)与金黄色葡萄球菌(S.aureus)的同步鉴别。图7展示混合菌株的特征质谱峰叠加图谱。

图 7:金黄色葡萄球菌(A)和单一平板上同时存在金黄色葡萄球菌和大肠杆菌(B)的谱图。

总结

基于 vAPCI 离子源与 AIS expression 质谱仪的联用技术,体外细菌培养物挥发性有机物(VOCs)检测方案已通过实验验证。该技术具备以下核心优势:

非破坏性采样
  • 支持对细菌代谢特征的长期动态监测,避免样本损耗,适用于连续培养研究。

智能菌株鉴别
  • 24小时实现菌株100%区分(灵敏度与特异性双达标);

  • 2小时早期预警:部分菌株(如金黄色葡萄球菌)鉴别准确率超91%。

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